Concentration parasitaire des selles
Examen biologique : Parasitologie et mycologie. La concentration parasitaire des selles sépare les éléments parasitaires des débris fécaux afin d’augmenter la probabilité de détection lorsqu’ils sont peu nombreux. Elle recherche qualitativement des œufs, larves, kystes, trophozoïtes et oocystes par copromicroscopie. Un résultat rapporte les éléments observés ou non observés dans l’échantillon; un résultat négatif n’exclut pas à lui seul une présence intermittente ou en faible quantité.
À quoi sert cet examen
L’examen est utilisé pour rechercher si des parasites intestinaux expliquent des symptômes compatibles avec une infection digestive et peut aussi contribuer au suivi d’une réponse au traitement, sans se substituer à l’évaluation clinique [s3].
Les situations pouvant motiver la demande comprennent notamment une diarrhée, des douleurs abdominales, du sang ou du mucus dans les selles, des selles grasses malodorantes et flottantes, des nausées ou vomissements, des gaz, de la fièvre ou une perte de poids [s3].
Une recherche est davantage envisagée en cas de symptômes importants, de déshydratation ou déséquilibre électrolytique, d’immunodépression, d’âge très jeune ou avancé, ou d’exposition possible par eau, voyage ou contact avec une personne infectée [s3].
La concentration par sédimentation sépare les parasites des débris et augmente les chances de détection quand les organismes sont peu nombreux [s1].
L’OMS présente la copromicroscopie comme une approche de diagnostic de routine et d’enseignement pour l’identification des œufs, larves, trophozoïtes, kystes et oocystes dans les selles [s4].
Valeurs de référence
| Type de résultat [s5] | Résultat attendu [s3,s5] |
|---|---|
| Négatif / non détecté [s3,s5] | Aucun parasite ni œuf observé dans l’échantillon examiné; une faible charge ou une excrétion intermittente peut toutefois limiter la détection [s3]. |
| Positif / détecté [s3,s5] | Un ou plusieurs parasites et/ou œufs sont observés et le compte rendu précise le type identifié et, si disponible, la quantité observée [s3]. |
Cet examen est qualitatif; aucun intervalle biologique chiffré par âge ou sexe ne doit être fabriqué. Le laboratoire fait foi pour la méthode, la lecture et le format du compte rendu [s3,s5].
Aucune valeur de référence africaine universelle n’est fournie par les sources consultées; donnée non disponible. L’étude menée en Éthiopie chez des femmes enceintes documente une performance méthodologique et non un intervalle de référence [s6].
Seuils de décision et gravité
Aucun seuil décisionnel, seuil critique ou seuil de positivité numérique n’est fourni pour cette méthode qualitative dans les sources consultées; donnée non disponible [s1,s3,s5].
Interprétation
Un résultat négatif signifie qu’aucun parasite ni œuf n’a été trouvé dans l’échantillon analysé; il peut aussi correspondre à une quantité insuffisante pour la détection [s3].
Un résultat positif signifie que des parasites et/ou des œufs ont été observés dans l’échantillon; le compte rendu doit nommer les éléments identifiés lorsqu’ils peuvent l’être [s3,s4].
Facteurs qui faussent le résultat
La collecte doit éviter l’urine, l’eau, le sol et les autres matières; le récipient doit rester propre, sec, étanche et correctement fermé [s2,s3].
Les selles fraîches doivent être examinées, traitées ou conservées immédiatement; les trophozoïtes mobiles peuvent se désintégrer si le délai est prolongé [s1,s2].
Pour une selle liquide, l’examen des trophozoïtes doit intervenir dans les 30 minutes suivant l’émission; pour une selle molle, dans l’heure suivant l’émission [s1].
Une selle formée peut être conservée jusqu’à 1 jour, avec réfrigération pendant la nuit si nécessaire, avant l’examen [s1].
Si un fixateur est utilisé, le CDC recommande de préserver l’échantillon dès que possible; en l’absence de kit, il décrit le partage dans du formol à 10 % et du PVA, avec un volume de selles pour trois volumes de fixateur [s2].
Le formol à 10 % conserve bien la morphologie des œufs d’helminthes, larves, kystes de protozoaires et coccidies et convient aux procédures de concentration, mais il préserve mal la morphologie des trophozoïtes et peut gêner la PCR après fixation prolongée [s2].
Les antiacides, le kaolin, l’huile minérale et autres produits huileux, certains antidiarrhéiques non absorbables, le baryum ou le bismuth, les antimicrobiens et les colorants biliaires peuvent rendre les selles impropres à l’examen; le prélèvement doit précéder ces substances ou attendre la fin de leurs effets selon les délais indiqués par le CDC [s2].
La concentration par flottation donne un matériel plus propre mais peut faire s’affaisser les parois de certains œufs ou kystes et certains œufs ne flottent pas; la sédimentation est recommandée en laboratoire général car elle est plus simple et moins sujette aux erreurs techniques [s1].
La procédure CDC de sédimentation au formol-acétate d’éthyle utilise 5 mL de suspension fécale environ, un volume final de 15 mL, une centrifugation à 500 × g pendant 10 minutes, puis 10 mL de formol à 10 %, 4 mL d’acétate d’éthyle, une agitation de 30 secondes et une seconde centrifugation à 500 × g pendant 10 minutes; ces paramètres décrivent cette procédure et ne remplacent pas la procédure validée du laboratoire [s1].
Dans une étude transversale de 797 femmes enceintes en Éthiopie, la prévalence combinée rapportée était de 35,2 %, contre 13,1 % par examen direct et 25,7 % par concentration formol-éther; la sensibilité rapportée était de 37,1 % pour l’examen direct et 73,5 % pour la concentration formol-éther dans cette population particulière [s6].
La revue historique décrit la sédimentation centrifuge comme une méthode destinée à récupérer les structures parasitaires des selles et rapporte que l’acétate d’éthyle a remplacé l’éther éthylique pour réduire les problèmes de flammabilité, volatilité, explosion et toxicité environnementale [s7].
Si le premier examen est négatif, plusieurs prélèvements peuvent être nécessaires car les parasites ne sont pas présents dans les selles chaque jour; le CDC indique que, si possible, trois selles recueillies à 2–3 jours d’intervalle peuvent être examinées [s2].
Sources
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Stool Specimens – Specimen Processing (2026)
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Stool Specimens – Specimen Collection (2026)
- MedlinePlus, U.S. National Library of Medicine. Ova and Parasite Test (2023)
- World Health Organization (WHO). Bench Aids for the diagnosis of intestinal parasites, second edition (2019)
- LOINC, Regenstrief Institute. LOINC 10701-1: Ova and parasites identified in Stool by Concentration (2026)
- Demeke G, Fenta A, Dilnessa T. Evaluation of Wet Mount and Concentration Techniques of Stool Examination for Intestinal Parasites Identification at Debre Markos Comprehensive Specialized Hospital, Ethiopia (2021)
- Soares FA, Benitez AN, dos Santos BM, et al.. A historical review of the techniques of recovery of parasites for their detection in human stools (2020)