Fraction plaquettaire immature
Examen biologique : Hématologie. La fraction plaquettaire immature (IPF%) est la proportion de plaquettes immatures, aussi appelées plaquettes réticulées, parmi les plaquettes circulantes; elle reflète l’activité récente de la thrombopoïèse. Une IPF plus élevée est compatible avec une production médullaire active en contexte de destruction ou de consommation périphérique, tandis qu’une IPF plus basse peut accompagner une production médullaire diminuée; l’interprétation dépend de l’analyseur, de la population et de la numération plaquettaire.
À quoi sert cet examen
L’IPF% quantifie les plaquettes récemment libérées par la moelle; l’IPF# exprime leur nombre absolu. Ces paramètres apportent une information dynamique sur la thrombopoïèse, en complément de la numération plaquettaire. [s1,s2]
L’examen est surtout utilisé pour contribuer à la distinction entre thrombopénie liée à une destruction ou une consommation périphérique, où la thrombopoïèse reste active, et thrombopénie liée à une production médullaire diminuée. [s2,s3]
L’IPF peut aussi être suivie dans certaines thrombopénies néonatales et dans l’évaluation de la réponse médullaire; elle ne suffit pas seule à établir la cause d’une thrombopénie. [s2,s4]
Valeurs de référence
Les intervalles de référence de l’IPF ne sont pas interchangeables: ils varient selon la population de référence, l’analyseur et la méthode. L’intervalle validé par le laboratoire local fait foi; les données ci-dessous sont présentées avec leur population et leur analyseur. [s1,s6,s8]
| Population et analyseur [s1,s6,s7,s8] | Intervalle IPF% [s1,s6,s7,s8] | IPF absolue et précisions [s1,s6,s8] |
|---|---|---|
| Adultes caucasiens sains en Espagne; Sysmex XN-2000; n=153 [s1] | 1,6–9,6 % [s1] | Pas d’intervalle de référence A-IPF établi; médiane 10,23 (6,81–14,16) ×10⁹/L dans cette cohorte. [s1] |
| Population du Royaume-Uni; Sysmex XN-10; 2 366 échantillons [s6] | Total: 1,6–10,1 %; hommes: 1,8–10,0 %; femmes: 1,5–10,1 % [s6] | A-IPF: 4,37–23,21 ×10⁹/L; les intervalles IPF% sont sexospécifiques dans cette étude. [s6] |
| Population saine étudiée en Corée; Sysmex XE-2100; intervalles séparés par sexe [s7] | Hommes: 0,5–3,2 %; femmes: 0,4–3,0 % [s7] | Intervalle de référence à 95 % rapporté par l’étude; l’intervalle est propre à cette population et à cet analyseur. [s7] |
| Adultes taïwanais sains suivis en consultation; méthode d’analyse évaluée dans l’étude [s8] | 3,1–3,4 % [s8] | A-IPF: 6,9–7,6 ×10⁹/L; l’étude souligne l’effet de la méthode de détection et de la sélection des sujets. [s8] |
Aucune étude africaine de sujets sains n’a été retenue pour établir un intervalle de référence général de l’IPF. Une étude sud-africaine fournit toutefois des valeurs observées chez 78 adultes VIH positifs avec thrombopénie; elles décrivent cette cohorte clinique et ne remplacent pas un intervalle de référence local. [s5]
| Population clinique sud-africaine [s5] | IPF observée [s5] | Précision [s5] |
|---|---|---|
| Patients VIH positifs avec thrombopénie, toutes catégories; n=78 [s5] | Médiane 7,6 %; étendue 1,3–44 % [s5] | IPF mesurée sur Sysmex XE-5000; cohorte recrutée au Charlotte Maxeke Johannesburg Academic Hospital. [s5] |
| Thrombopénie immune [s5] | Médiane 16,3 % [s5] | Valeur observée dans le sous-groupe diagnostique de cette étude, et non intervalle de référence. [s5] |
| Moelle hypocellulaire [s5] | Médiane 6,5 % [s5] | Valeur observée dans le sous-groupe diagnostique de cette étude, et non intervalle de référence. [s5] |
| Infiltration médullaire maligne [s5] | Médiane 8,4 % [s5] | Valeur observée dans le sous-groupe diagnostique de cette étude, et non intervalle de référence. [s5] |
| Infection mycobactérienne de la moelle [s5] | Médiane 7,1 % [s5] | Valeur observée dans le sous-groupe diagnostique de cette étude, et non intervalle de référence. [s5] |
Chez le nouveau-né, l’IPF peut être exprimée en pourcentage et en nombre absolu; les valeurs publiées ci-dessous sont des données de catégories de thrombopénie néonatale, non un intervalle de référence pédiatrique général. [s4]
| Catégorie néonatale [s4] | Effectif [s4] | IPF% moyenne ± écart-type [s4] | Nombre absolu de plaquettes immatures, moyenne ± écart-type (µL⁻¹) [s4] |
|---|---|---|---|
| Hypoproliférative [s4] | 92 [s4] | 10,4 ± 2,9 % [s4] | 10,95 ± 4,99 µL⁻¹ [s4] |
| Consomptive [s4] | 98 [s4] | 20,9 ± 7,9 % [s4] | 24,63 ± 13,25 µL⁻¹ [s4] |
| Les deux mécanismes [s4] | 76 [s4] | 17,9 ± 5,9 % [s4] | 21,36 ± 9,40 µL⁻¹ [s4] |
| Indéterminée [s4] | 14 [s4] | 12,8 ± 8,1 % [s4] | 9,36 ± 3,86 µL⁻¹ [s4] |
Seuils de décision et gravité
Un seuil clinique n’est pas un intervalle de référence. Les valeurs publiées ci-dessous sont des seuils de recherche propres à leur population, à leur analyseur et à la question étudiée; elles ne constituent pas un seuil universel. [s2,s5,s8]
| Contexte [s2,s5] | Seuil IPF% [s2,s5] | Donnée associée [s2,s5] |
|---|---|---|
| Différenciation d’une destruction périphérique accrue et d’une production diminuée chez des patients thrombopéniques [s2] | 5,95 % [s2] | Seuil optimal de l’étude Mindray BC-6800; sensibilité 88 % et spécificité 75,9 %. [s2] |
| Seuil rapporté dans la cohorte sud-africaine de patients VIH positifs avec thrombopénie [s5] | >7,7 % [s5] | Valeur rapportée dans cette étude utilisant le Sysmex XE-5000; elle ne remplace pas le seuil validé localement. [s5] |
Interprétation
Une IPF diminuée peut être compatible avec une thrombopoïèse médullaire réduite, notamment dans les états d’insuffisance ou d’hypoplasie médullaire; elle doit être interprétée avec la numération plaquettaire et les autres lignées sanguines. [s2,s3]
Dans l’étude clinique sur analyseur Mindray BC-6800, la moyenne d’IPF était de 4,6 ± 4,5 % dans le groupe à production plaquettaire diminuée, qui comprenait notamment une insuffisance médullaire, une anémie aplasique et des leucémies aiguës. [s2]
Une IPF basse n’identifie pas à elle seule une cause: les intervalles et les seuils diffèrent selon l’analyseur, la population et la numération plaquettaire. [s1,s6,s8]
Une IPF augmentée est compatible avec une libération accrue de plaquettes immatures lors d’une destruction ou d’une consommation périphérique, ou pendant une récupération médullaire; elle ne permet pas seule d’établir un diagnostic. [s2,s3]
Dans l’étude clinique sur analyseur Mindray BC-6800, la moyenne d’IPF était de 13,4 ± 7,1 % dans le groupe à destruction ou consommation périphérique, contre 4,6 ± 4,5 % dans le groupe à production diminuée. [s2]
Chez les patients sud-africains VIH positifs avec thrombopénie, la médiane était de 16,3 % dans le sous-groupe de thrombopénie immune et de 6,5 % dans celui à moelle hypocellulaire; ces valeurs sont propres à cette cohorte. [s5]
Facteurs qui faussent le résultat
L’analyseur et la méthode de détection influencent l’IPF: des intervalles très différents ont été publiés avec les systèmes Sysmex XE-2100, XN-10 et XN-2000, et l’étude taïwanaise conclut que la méthode de détection et la sélection des sujets contribuent aux divergences d’intervalle. [s1,s6,s7,s8]
La population de référence, le sexe et l’origine ethnique doivent être considérés; l’étude britannique rapporte des intervalles IPF% séparés chez les hommes et les femmes, tandis que l’étude espagnole n’a pas observé de différence de sexe suffisante pour retenir des intervalles distincts. [s1,s6]
Pour le prélèvement, l’IPF peut être mesurée dans un sang total anticoagulé par EDTA jusqu’à 24 heures à température ambiante; dans l’étude de stabilité citée, les échantillons citratés restaient exploitables jusqu’à 6 heures à température ambiante. [s3]
Le délai avant analyse, l’anticoagulant, la numération plaquettaire et les caractéristiques de la population doivent être documentés avec le résultat; une valeur obtenue sur une autre plateforme ne doit pas être comparée directement à un intervalle publié sans vérifier la méthode. [s1,s3,s8]
Sources
- Claudia E. Imperiali; Ariadna Arbiol-Roca; Lourdes Sanchez-Navarro; Macarena Dastis-Arias; Juan C. Lopez-Delgado; Anna Cortes-Bosch; Ana Sancho-Cerro; Dolors Dot-Bach. Reference interval for immature platelet fraction on Sysmex XN haematology analyser in adult population (2018)
- Garima Goel; Shruti Semwal; Akriti Khare; Deepti Joshi; Chaitanya K. Amerneni; Abhijit Pakhare; Neelkamal Kapoor. Immature Platelet Fraction: Its Clinical Utility in Thrombocytopenia Patients (2021)
- Marc Michel Noel; Guillaume Feugray; Fiston Kasonga; Gérard Buchonnet; Sylvie Daliphard; Virginie Barbay; Elsa Bera; Véronique Le Cam Duchez; Paul Billoir. Stability over time of immature platelet fraction and comparison between EDTA and citrated whole blood samples (2023)
- B. C. MacQueen; R. D. Christensen; E. Henry; A. M. Romrell; T. J. Pysher; S. T. Bennett; M. C. Sola-Visner. The immature platelet fraction: creating neonatal reference intervals and using these to categorize neonatal thrombocytopenias (2017)
- Jenifer Vaughan; Tracey Wiggill; Marion Munster. Immature platelet fraction levels in a variety of bone marrow pathologies in South African HIV-positive patients with thrombocytopenia (2014)
- Usman Ali; Gavin Knight; Richard Gibbs; Dimitris A. Tsitsikas. Reference intervals for absolute and percentage immature platelet fraction using the Sysmex XN-10 automated haematology analyser in a UK population (2017)
- Haiyoung Jung; Hee-Kyung Jeon; Hee-Jin Kim; Sun-Hee Kim. Immature Platelet Fraction: Establishment of a Reference Interval and Diagnostic Measure for Thrombocytopenia (2010)
- Wu MF; Hsieh HH; Huang WC; Lu KM; Lin JH; Lin YC; Wang JM; Lin TH. Effects of Analyzer Detection Method, Ethnicity, and Reference Individuals on Reference Interval of Immature Platelet Fraction (2018)