Frottis sanguin paludisme
Examen biologique : Parasitologie et mycologie. Le frottis sanguin paludisme recherche microscopiquement des parasites Plasmodium dans le sang; l’examen repose sur des films épais et minces colorés, généralement au Giemsa. Le film épais concentre les éléments sanguins et sert surtout à détecter les parasites, tandis que le film mince conserve mieux la morphologie et sert à l’identification de l’espèce. Un résultat négatif n’exclut pas à lui seul une infection lorsque la parasitémie est faible ou variable; le laboratoire interprète le résultat selon la méthode, la qualité de la lame et le contexte clinique.
À quoi sert cet examen
La microscopie des films sanguins colorés au Giemsa est une procédure de détection et d’identification des parasites du paludisme [s1].
Le film épais est utilisé préférentiellement pour rechercher la présence de parasites, car les parasites y sont plus concentrés; le film mince est utilisé préférentiellement pour l’identification au niveau de l’espèce [s2,s3,s6].
L’examen peut contribuer à distinguer les espèces de Plasmodium et, lorsque le laboratoire le réalise, à estimer la parasitémie sur le film épais ou mince [s2,s7].
Une goutte de sang examinée au microscope constitue l’échantillon de l’examen; les tests sanguins du paludisme recherchent des signes d’infection dans le sang [s4].
Un frottis est indiqué lorsqu’une recherche parasitologique du paludisme est nécessaire, notamment chez une personne symptomatique ayant séjourné ou vivant dans une zone où le paludisme est présent [s4].
Valeurs de référence
Résultat attendu : **Plasmodium non détecté** dans l’échantillon examiné; il n’existe pas d’intervalle biologique chiffré universel pour cet examen qualitatif [s2,s4,s5].
Résultat positif : **Plasmodium détecté**, avec description de l’espèce lorsque la morphologie sur film mince le permet et, si demandé, estimation de la parasitémie [s2,s3,s5].
Le laboratoire fait foi pour la catégorie rapportée, la méthode de coloration, la qualité de la préparation, la population examinée et la règle locale de compte rendu [s1,s2,s3].
Seuils de décision et gravité
Pour déclarer un film épais « aucun parasite trouvé », le CDC rapporte que l’OMS recommande de parcourir au moins 100 champs contenant chacun environ 20 leucocytes; avec une numération de référence de 8 000 leucocytes/µL, cela correspond à un seuil de sensibilité théorique de 4 parasites/µL [s7].
Chez les personnes non immunes, un paludisme symptomatique peut survenir à des densités parasitaires inférieures; le nombre de champs examinés peut donc être augmenté selon le contexte et les ressources disponibles [s7].
Le seuil décisionnel propre au laboratoire Africa Medical Data et le délai de rendu associé ne sont pas disponibles dans les sources consultées [s1,s2,s3,s4,s5,s6,s7].
Interprétation
Un résultat négatif signifie qu’aucun signe de parasite n’a été trouvé dans l’échantillon examiné, mais il n’exclut pas le paludisme, car la quantité de parasites dans le sang peut varier dans le temps [s4].
Une faible parasitémie, une quantité de sang examinée insuffisante ou des parasites perdus pendant la coloration peuvent réduire la détection au frottis [s6].
Après un résultat négatif, MedlinePlus indique que des prélèvements supplémentaires sont habituellement réalisés toutes les 12–24 heures, pour un total de 3 séries de tests, lorsque la suspicion persiste [s4].
Un résultat positif correspond à la détection de parasites Plasmodium dans le film examiné [s2,s4,s5].
Le film mince peut montrer des caractères morphologiques compatibles avec une espèce de Plasmodium; lorsque les caractères se chevauchent ou sont altérés, une confirmation moléculaire peut être nécessaire, car la microscopie ne permet pas toujours de différencier les espèces [s2].
La parasitémie peut être exprimée en pourcentage d’hématies parasitées sur film mince ou en parasites/µL sur film épais lorsque la quantification est demandée et réalisable [s7].
Facteurs qui faussent le résultat
Le sang veineux doit être étalé dès que possible après le prélèvement; un délai peut modifier la morphologie parasitaire et les caractéristiques de coloration [s3].
Le CDC recommande de préparer au moins 2 films par patient pour le film épais et au moins 2 films par patient pour le film mince [s3].
Le film épais ne doit pas être fixé au méthanol ni à la chaleur; il doit sécher complètement, avec 30 minutes comme durée minimale rapportée dans la procédure CDC, et être protégé de la poussière, des insectes et de la chaleur [s3].
Un film épais trop épais ou insuffisamment séché peut se détacher pendant la coloration; le risque est accru avec du sang anticoagulé [s3].
Les films épais colorés au Giemsa, au Wright ou au Wright-Giemsa peuvent montrer des parasites, mais le Giemsa est la coloration préférée pour certains caractères morphologiques [s2].
Pour le dépistage microscopique, le film épais doit d’abord être parcouru à faible grossissement puis examiné à l’objectif 100× à immersion; la zone choisie doit être bien colorée, sans précipité et comporter environ 10–20 leucocytes par champ [s7].
Pour une parasitémie exprimée en pourcentage, le CDC décrit le comptage des hématies parasitées parmi 500–2 000 hématies sur film mince; en cas de parasitémie élevée, par exemple >10 %, 500 hématies sont examinées, et en cas de parasitémie faible, par exemple <1 %, 2 000 hématies ou davantage [s7].
Pour une quantification sur film épais, les parasites sont comptés par rapport aux leucocytes jusqu’à 500 parasites ou 1 000 leucocytes, selon le premier seuil atteint; si la numération leucocytaire n’est pas connue, la formule CDC peut utiliser 8 000 leucocytes/µL [s7].
La microscopie peut être moins sensible lorsque la parasitémie est très faible; une étude expérimentale a observé, chez 80 volontaires et sur 870 paires de films et de prélèvements PCR, une sensibilité du film épais de 9 % entre 100 et 1 000 parasites/mL, de 29 % entre 1 000 et 10 000 parasites/mL et de 81 % au-dessus de 10 000 parasites/mL [s6].
Les estimations de densité par film épais peuvent être sous-estimées: dans l’étude expérimentale, elles étaient en général environ 10 fois inférieures aux densités calculées par dilution, et de nombreux parasites pouvaient être perdus pendant la coloration [s6].
Une morphologie altérée par un traitement antérieur ou par un stockage inadéquat de l’échantillon peut gêner l’identification de l’espèce [s2].
Sources
- World Health Organization (WHO). Microscopy examination of thick and thin blood films for identification of malaria parasites (2016)
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC). DPDx — Malaria (2026)
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Blood Specimens — Specimen Processing (2026)
- MedlinePlus, U.S. National Library of Medicine. Malaria Tests (2026)
- LOINC, Regenstrief Institute. LOINC 637-9 — Plasmodium sp identified in Blood by Thick film (2026)
- Bejon P, Andrews L, Hunt-Cock K, et al.. Thick blood film examination for Plasmodium falciparum malaria has reduced sensitivity and underestimates parasite density (2006)
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Blood Specimens — Microscopic Examination (2026)