Immunophénotypage des blastes

Examen biologique : Hématologie. L’immunophénotypage des blastes caractérise les antigènes exprimés par les cellules immatures, le plus souvent par cytométrie en flux multiparamétrique. Il contribue à identifier les blastes, à attribuer une lignée et un profil de maturation, et à orienter la classification d’une leucémie aiguë en complément de la morphologie, de la cytogénétique et des analyses moléculaires.

À quoi sert cet examen

L’examen analyse les antigènes de surface et intracellulaires exprimés par les cellules suspectes afin de repérer une population blastique, de la distinguer des précurseurs hématopoïétiques normaux et d’orienter sa lignée et son stade de maturation. [s1,s2]

Il s’intègre au bilan initial d’une leucémie aiguë avec l’évaluation morphologique; un panel suffisamment large doit permettre de distinguer les leucémies myéloïdes, B-lymphoblastiques, T-lymphoblastiques et de phénotype ambigu. [s3,s4]
Les combinaisons d’antigènes permettent de rechercher les marqueurs myéloïdes, monocytaires et lymphoïdes, ainsi que les expressions aberrantes; un marqueur isolé ne suffit pas toujours à attribuer une lignée, car des antigènes associés à une lignée peuvent être exprimés dans une autre. [s2,s5]
Le résultat peut contribuer à la classification et à l’établissement d’un profil immunophénotypique de référence pour une éventuelle détection ultérieure de maladie résiduelle mesurable. [s1,s3,s6]
L’interprétation est intégrée aux données cliniques, morphologiques, cytogénétiques et moléculaires; l’immunophénotypage seul ne constitue pas nécessairement une classification définitive. [s1,s3,s4]

Facteurs qui faussent le résultat

L’examen est réalisé sur un échantillon frais de moelle osseuse; le sang périphérique peut être utilisé si l’aspirat médullaire est inadéquat ou si une raison clinique justifie d’éviter l’examen médullaire, à condition qu’il contienne suffisamment de blastes. [s3,s4]
La qualité et l’adéquation du prélèvement, sa provenance et les informations de collecte doivent accompagner l’interprétation; les prélèvements doivent être traités et conservés dans des conditions appropriées par un laboratoire répondant aux exigences applicables. [s3]
Si le matériel sanguin ou médullaire ne permet pas la cytométrie en flux, des méthodes immunohistochimiques peuvent fournir un immunophénotypage limité. [s3,s4]
Les panels d’anticorps, réactifs, instruments, stratégies d’analyse et formats de compte rendu varient entre laboratoires; cette variabilité et le besoin d’expertise peuvent limiter la comparabilité interlaboratoires. [s1,s2,s6]
L’évaluation d’une leucémie de phénotype ambigu requiert des critères combinant des marqueurs définissant la lignée et leur intensité ou leur expression coordonnée; les critères WHO-HEM5 et ICC présentent certaines différences d’application. [s5]

Sources

F. Ally et al.. Acute Myeloid Leukemia: Diagnosis and Evaluation by Flow Cytometry (2024)
J.J.M. van Dongen et al.. EuroFlow antibody panels for standardized n-dimensional flow cytometric immunophenotyping of hematological malignancies (2012)
V. de Haas et al.. Initial Diagnostic Work-Up of Acute Leukemia: ASCO Clinical Practice Guideline Endorsement of the CAP and ASH Guideline (2019)
Melissa H. Cessna; Sa A. Wang. Initial Diagnostic Workup of Acute Leukemia: A Pocket Guide for the Clinician (2017)
F. Fuda et al.. Acute Leukemia of Ambiguous Lineage: Diagnosis and Management (2025)
X.M. Wang et al.. Advances and issues in flow cytometric detection of minimal residual disease in acute leukemia (2014)