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Morphologie des leucocytes

Examen biologique : Hématologie. L’examen décrit la morphologie des leucocytes sur frottis sanguin périphérique et complète la numération-formule sanguine pour rechercher des cellules réactives, des précurseurs myéloïdes, des blastes, une dysplasie ou des signes d’infection. La morphologie oriente l’interprétation et les examens complémentaires, mais un frottis seul ne pose pas un diagnostic.

À quoi sert cet examen

Le frottis sanguin examine la taille, la forme et le nombre des cellules et peut contribuer au diagnostic et au suivi de maladies du sang, d’infections et de certaines parasitoses; il ne suffit pas à lui seul pour diagnostiquer une maladie [s1].

  • La formule leucocytaire distingue les pourcentages relatifs des neutrophiles segmentés, neutrophiles en bande, lymphocytes, monocytes, éosinophiles et basophiles; l’examen morphologique ajoute l’étude des caractéristiques nucléaires et cytoplasmiques [s2].
  • La revue du frottis peut distinguer une leucocytose réactionnelle d’un processus malin, identifier les blastes et les précurseurs myéloïdes, reconnaître une dysplasie myéloïde et repérer des lymphocytes atypiques [s3].
  • Une lecture systématique du frottis est recommandée, notamment dans la monocouche et avec changement de grossissement; les parasites intracellulaires, dont le paludisme, font partie des éléments à savoir reconnaître [s3].
  • Une demande de revue est pertinente en cas de leucopénie inexpliquée, de suspicion d’infection parasitaire, de syndrome lymphoprolifératif, de syndrome myéloprolifératif, de syndrome myélodysplasique ou de mononucléose infectieuse [s6].

Valeurs de référence

Les données suivantes sont des proportions différentielles et des descripteurs morphologiques publiés, et non un intervalle universel applicable à tous les laboratoires; les intervalles et conventions du laboratoire local font foi selon sa méthode et sa population [s2,s4].

Leucocyte ou aspect [s2]Donnée publiée [s2]Population, méthode et contexte [s2]
Neutrophiles [s2]Environ 40–75 % des leucocytes [s2]Adultes; proportion différentielle sur frottis sanguin périphérique [s2]
Lymphocytes [s2]Environ 20–45 % des leucocytes [s2]Adultes; proportion différentielle sur frottis sanguin périphérique [s2]
Éosinophiles [s2]Environ 1–6 % des leucocytes [s2]Adultes; proportion différentielle sur frottis sanguin périphérique [s2]
Monocytes [s2]Environ 2–10 % des leucocytes [s2]Adultes; proportion différentielle sur frottis sanguin périphérique [s2]
Basophiles [s2]Moins de 1 % des leucocytes [s2]Adultes; proportion différentielle sur frottis sanguin périphérique [s2]
Neutrophile mature [s2]Noyau segmenté comportant 2–5 lobes reliés par un fin filament; cytoplasme rose ou presque incolore avec granulations azurophiles et spécifiques [s2]Description morphologique d’un frottis périphérique adulte [s2]
Lymphocyte mature [s2]Petit lymphocyte rond, rapport nucléo-cytoplasmique élevé et cytoplasme bleu pâle à foncé peu abondant [s2]Description morphologique sur frottis périphérique [s2]
Monocyte mature [s2]Grande cellule périphérique, cytoplasme bleu-gris d’aspect vitreux et noyau de forme variable, souvent en fer à cheval [s2]Description morphologique sur frottis périphérique [s2]
Éosinophile mature [s2]Cellule légèrement plus grande qu’un polynucléaire, noyau habituellement bilobé et granulations orange-rouge [s2]Description morphologique sur frottis périphérique [s2]
Basophile mature [s2]Cellule légèrement plus petite qu’un polynucléaire, avec de grandes granulations bleu foncé pouvant masquer le noyau [s2]Description morphologique sur frottis périphérique [s2]

Une étude ougandaise chez de jeunes adultes africains a observé des numérations leucocytaires et neutrophiliques plus basses que chez le groupe contrôle; ces résultats ne remplacent pas les intervalles locaux et ne constituent pas un intervalle de référence universel [s5].

Paramètre [s5]Résultat observé [s5]Population et méthode [s5]
Leucocytes totaux [s5]4,95 ± 1,09 × 10⁹/L; intervalle observé 3,4–7,7 × 10⁹/L [s5]38 étudiants africains d’Ouganda, 18–30 ans; NFS sur analyseur Mindray BC3000 plus par impédance électrique [s5]
Neutrophiles [s5]49 ± 7,5 %; numération absolue 2,45 ± 0,76 × 10⁹/L; intervalle absolu observé 1,27–4,38 × 10⁹/L [s5]Même population; frottis coloré au Leishman et formule manuelle sur 200 cellules [s5]
Groupe contrôle [s5]Leucocytes totaux 7,42 ± 1,7 × 10⁹/L; neutrophiles 63,6 ± 9,8 %; numération absolue des neutrophiles 4,76 ± 1,47 × 10⁹/L [s5]38 étudiants indiens appariés sur l’âge et le sexe; même analyseur et comparaison par test t non apparié [s5]

La proportion relative des lymphocytes est normalement prédominante chez les enfants âgés de moins de 5 ans selon la revue consultée; aucune autre plage pédiatrique morphologique chiffrée n’a été retenue ici [s2].

Seuils de décision et gravité

  • Le laboratoire local définit ses critères de relecture et ses intervalles selon l’analyseur, la méthode, la population et le contexte clinique; les critères publiés sont des critères opératoires et ne sont pas des seuils cliniques universels [s4,s6].
  • Dans la revue consultée, une population de neutrophiles en bande inférieure à 8 % et de métamyélocytes inférieure à 0,5 % est décrite comme habituelle; l’augmentation des précurseurs circulants est appelée déviation gauche [s2].
  • La neutrophilie hypersegmentée est décrite par la présence d’au moins un neutrophile avec 6 segments nucléaires ou plus, ou d’au moins 5 % des neutrophiles avec 5 segments nucléaires [s2].
  • Une éosinophilie marquée supérieure à 1500/ml est rapportée comme pouvant suggérer un syndrome hyperéosinophilique, notamment en présence d’une atteinte tissulaire; l’unité et le seuil sont reproduits tels qu’indiqués par la source [s2].
  • Pour une formule manuelle, une revue méthodologique indique qu’elle comprend habituellement une formule sur 100 cellules, avec un nombre pouvant varier de 25 à 200 ou 300 selon la numération leucocytaire; il s’agit d’une procédure opératoire, non d’un seuil diagnostique [s6].

Interprétation

  • Une diminution de la numération leucocytaire ou neutrophilique doit être interprétée avec la formule absolue, la morphologie et le contexte clinique; l’étude ougandaise souligne qu’une numération basse peut être constitutionnelle chez des personnes africaines en bonne santé [s5].
  • La leucopénie et la neutropénie font partie des situations où une revue du frottis peut être indiquée, notamment lorsqu’elles sont inexpliquées [s3,s6].
  • Une déviation gauche correspond à une augmentation anormale des précurseurs neutrophiliques circulants; des granulations toxiques peuvent être observées dans les infections sévères [s2].
  • La neutrophilie peut être associée à une infection bactérienne, à une inflammation aiguë, à des brûlures, aux corticostéroïdes, à une malignité ou à une leucémie myéloïde chronique; la morphologie seule ne permet pas de retenir une cause [s2].
  • Les lymphocytes réactifs sont volumineux, avec un noyau irrégulier ou indenté, un cytoplasme abondant pouvant entourer les hématies et parfois des nucléoles; des blastes lymphoïdes peuvent leur ressembler mais présentent un rapport nucléo-cytoplasmique élevé [s2].
  • Une éosinophilie importante peut être observée dans les allergies et les infections parasitaires; une basophilie est décrite dans des états d’hypersensibilité et certaines hémopathies [s2].
  • La présence de blastes, de précurseurs myéloïdes, de cellules promyélocytaires circulantes ou d’une dysplasie myéloïde constitue un élément morphologique nécessitant une interprétation spécialisée dans le contexte clinique [s3].

Facteurs qui faussent le résultat

  • Aucune préparation spéciale n’est nécessaire pour un frottis sanguin selon MedlinePlus; un jeûne peut toutefois être demandé pour d’autres analyses prescrites en même temps [s1].
  • Une maladie sévère, le stress et les transfusions sanguines peuvent aussi être associés à des résultats anormaux du frottis [s1].
  • La préparation et la coloration adéquates du frottis ainsi qu’une lecture par un professionnel compétent sont nécessaires; les recommandations ICSH visent une nomenclature et une gradation reproductibles des anomalies morphologiques [s4,s6].
  • Les cellules cassées ou écrasées peuvent être des artéfacts et doivent être prises en compte lors du compte rendu; une revue manuelle des résultats automatisés est indiquée lorsqu’un analyseur génère des alertes morphologiques ou lorsque la formule automatisée est jugée non fiable [s2,s6].
  • Les différences de population, notamment les numérations leucocytaires et neutrophiliques plus basses observées chez de jeunes Africains en bonne santé, peuvent modifier l’interprétation; les intervalles du laboratoire local font foi [s5].

Sources

  1. MedlinePlus. Blood Smear: MedlinePlus Medical Test (2022)
  2. AS Adewoyin, B Nwogoh. PERIPHERAL BLOOD FILM - A REVIEW (2014)
  3. Matthew L Chase et al.. Consensus recommendations on peripheral blood smear review: defining curricular standards and fellow competency (2023)
  4. L. Palmer, C. Briggs, S. McFadden, G. Zini, J. Burthem, G. Rozenberg, M. Proytcheva, S. J. Machin. ICSH Recommendations for the Standardization of Nomenclature and Grading of Peripheral Blood Cell Morphological Features (2015)
  5. Ritesh Goswami, Naveen Kakkar, M Joseph John. Lower Total Leukocyte and Neutrophil Counts in Healthy Young Africans from Uganda (2017)
  6. Gene Gulati, Jinming Song, Alina Dulau Florea, Jerald Gong. Purpose and Criteria for Blood Smear Scan, Blood Smear Examination, and Blood Smear Review (2012)