PCR Entamoeba histolytica
Examen biologique : Parasitologie et mycologie. La PCR recherche qualitativement des séquences d’ADN d’Entamoeba histolytica dans les selles et peut différencier cette espèce d’Entamoeba dispar et d’autres amibes morphologiquement proches. Elle est particulièrement utile lorsque l’identification morphologique n’est pas sans ambiguïté, mais l’interprétation dépend du prélèvement, de la méthode et des contrôles du laboratoire.
À quoi sert cet examen
La PCR détecte des séquences d’ADN d’Entamoeba histolytica dans un échantillon de selles par amplification d’acide nucléique [s5].
Elle peut être utilisée lorsqu’une identification morphologique du parasite n’est pas concluante; les méthodes moléculaires sont recommandées pour distinguer les espèces pathogènes d’Entamoeba [s1,s2].
La distinction entre E. histolytica et E. dispar est importante, car ces espèces peuvent être morphologiquement indissociables alors que leur rôle clinique diffère [s1,s3,s8].
La recherche peut s’inscrire dans l’évaluation d’une atteinte intestinale ou extra-intestinale compatible avec l’amibiase; la PCR sur selles ne remplace pas l’évaluation clinique et les examens complémentaires lorsque l’atteinte est extra-intestinale [s1,s3,s8].
Valeurs de référence
Examen qualitatif : résultat attendu « non détecté » dans les selles [s5].
Les modalités qualitatives rapportées par LOINC sont « détecté » et « non détecté »; aucun intervalle numérique ni unité quantitative n’est applicable à ce code qualitatif [s5].
Interprétation
Résultat « non détecté » : la cible d’ADN d’E. histolytica n’est pas détectée dans l’échantillon analysé par la méthode utilisée [s5].
Un résultat négatif ne renseigne pas à lui seul sur toutes les causes de symptômes digestifs; le prélèvement, sa conservation, l’extraction de l’ADN et la méthode analytique doivent être pris en compte [s2,s3,s4].
Résultat « détecté » : la séquence d’ADN ciblée d’E. histolytica est détectée dans l’échantillon de selles [s5].
Les PCR spécifiques peuvent discriminer E. histolytica d’E. dispar; le résultat doit être interprété avec le contexte clinique et le compte rendu complet du laboratoire, sans constituer à lui seul un diagnostic clinique [s1,s2,s3].
Facteurs qui faussent le résultat
Le prélèvement de référence est une selle; pour la PCR, les conservateurs cités comme compatibles par le CDC sont TotalFix, Unifix, PVA modifié à base de zinc ou de cuivre, et Ecofix [s2].
Une selle non conservée doit être gardée froide ou congelée et expédiée réfrigérée ou congelée selon la procédure de référence [s2].
Le formol, le SAF, le LV-PVA et le Protofix ne sont pas recommandés pour la détection moléculaire dans la procédure CDC consultée [s2].
L’extraction de l’ADN des selles est nécessaire avant la détection par PCR [s2].
La présence de matériel fécal peut nécessiter des contrôles d’inhibition; une étude de PCR a utilisé ces contrôles et n’a observé aucune inhibition dans les échantillons étudiés, ce résultat étant propre à son protocole [s7].
Dans une étude comparative menée à Dhaka sur 98 patients présentant une diarrhée, la PCR a identifié 46 des 53 infections à E. histolytica définies par l’isoenzyme sur des selles fraîches; ces performances sont propres au protocole étudié et ne constituent pas une valeur de référence générale [s6].
La microscopie ne permet pas de distinguer de façon fiable E. histolytica d’E. dispar; une méthode moléculaire spécifique est donc nécessaire lorsque cette distinction est recherchée [s1,s3,s8].
Le type de conservateur, la température de conservation, l’extraction et les cibles ou sondes propres au test peuvent modifier les performances; le laboratoire fait foi pour les conditions préanalytiques et analytiques validées [s1,s2,s5].
Sources
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC). DPDx – Amebiasis (2019)
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Stool Specimens – Molecular Diagnosis (2026)
- StatPearls Publishing; NCBI Bookshelf. Amebiasis (2026)
- MedlinePlus; U.S. National Library of Medicine. Ova and Parasite Test (2023)
- Regenstrief Institute; LOINC Committee. 82207-2 – Entamoeba histolytica DNA [Presence] in Stool by NAA with non-probe detection (2026)
- R. Haque; I. K. Ali; S. Akther; W. A. Petri Jr.. Comparison of PCR, isoenzyme analysis, and antigen detection for diagnosis of Entamoeba histolytica infection (1998)
- R. Fotedar et al.. PCR Detection of Entamoeba histolytica, Entamoeba dispar, and Entamoeba moshkovskii in Stool Samples from Patients in Sydney, Australia (2007)
- World Health Organization (WHO). Entamoeba histolytica (2025)