Recherche d'Ascaris lumbricoides

À quoi sert cet examen

Examen parasitologique des selles destiné à rechercher au microscope des œufs d’Ascaris lumbricoides et, plus largement, des formes parasitaires intestinales présentes dans l’échantillon [s1,s3].

Il peut être demandé lorsque des symptômes digestifs sont compatibles avec une parasitose intestinale, notamment diarrhée, douleurs abdominales, nausées, vomissements, gaz ou perte de poids, ou lorsqu’une exposition épidémiologique est possible [s2,s3].

La recherche apporte une preuve de présence ou de non-détection d’œufs dans le prélèvement analysé ; elle doit être interprétée avec le contexte clinique, l’exposition et la qualité du prélèvement, sans constituer à elle seule un diagnostic clinique [s1,s3,s4].

Valeurs de référence

Résultat attendu : non détecté dans l’échantillon de selles examiné [s1,s3].

Résultat détecté : œufs compatibles avec Ascaris lumbricoides observés au microscope ; le compte rendu doit préciser la cible identifiée et, si la méthode le permet, la présence d’autres parasites observés [s1,s3].

Aucun intervalle de référence chiffré n’est applicable à cet examen qualitatif ; le laboratoire fait foi pour la méthode, la population examinée et les critères morphologiques [s1,s3].

Interprétation

Résultat non détecté : aucun œuf ni parasite ciblé n’a été retrouvé dans l’échantillon examiné ; ce résultat peut aussi correspondre à une charge insuffisante ou à une excrétion intermittente, et ne permet donc pas à lui seul d’exclure une infection [s3,s4,s5].

Résultat détecté : l’observation microscopique d’œufs dans les selles est compatible avec la présence d’Ascaris dans l’échantillon [s1,s3].

Les œufs fécondés d’Ascaris sont décrits comme arrondis, à coque épaisse et couche externe mamelonnée ; la source consultée rapporte une longueur de 45 à 75 µm, tandis que les œufs non fécondés sont allongés et d’environ 90 µm [s4].

Facteurs qui faussent le résultat

Prélever les selles dans un récipient propre et sec ; éviter le contact avec l’urine, l’eau des toilettes et le papier toilette, identifier le récipient avec les informations demandées et le fermer hermétiquement [s3].

L’excrétion des œufs peut être intermittente ; l’analyse de plusieurs échantillons recueillis sur plusieurs jours augmente la probabilité de détection par rapport à un prélèvement unique [s3,s4].

Lorsque la concentration est disponible, la sédimentation formol-acétate d’éthyle est la procédure recommandée par le CDC DPDx ; en l’absence de concentration, un montage humide direct peut convenir surtout pour les infections modérées à fortes [s1].

Les techniques de flottation ne récupèrent pas toujours correctement les œufs infertiles d’Ascaris ; le choix de la méthode et la compétence du personnel peuvent donc influencer le résultat [s4,s5].

La microscopie Kato-Katz est utilisée surtout pour la détection quantitative et la surveillance des helminthiases transmises par le sol ; sa sensibilité est limitée lorsque l’intensité de l’infection est faible, et elle dépend de la répétition des prélèvements et de la formation des techniciens [s4,s5].

Les méthodes moléculaires pour l’ADN d’œuf ou de ver sont principalement décrites en contexte de recherche et ne remplacent pas automatiquement la méthode locale validée [s1,s5].

Sources

1. Centers for Disease Control and Prevention, DPDx. Ascariasis (2019)
2. Centers for Disease Control and Prevention. About Ascariasis (2024)
3. MedlinePlus, U.S. National Library of Medicine. Ova and Parasite Test (2023)
4. Sumeeta Khurana; Shveta Sethi. Laboratory diagnosis of soil transmitted helminthiasis (2017)
5. Poppy H. L. Lamberton; Peter M. Jourdan. Human Ascariasis: Diagnostics Update (2015)