Recherche de Giardia intestinalis
Examen biologique : Parasitologie et mycologie. La recherche de Giardia intestinalis est un examen qualitatif de selles qui vise à identifier des kystes ou des trophozoïtes de Giardia duodenalis, aussi appelée G. lamblia ou G. intestinalis, par examen direct et/ou concentration. Elle est utilisée devant une diarrhée ou d’autres symptômes compatibles et peut nécessiter plusieurs prélèvements, car l’excrétion est intermittente et la détection dans un échantillon unique peut être difficile. Le résultat doit être interprété avec la méthode utilisée et le contexte clinique; cette fiche ne pose pas de diagnostic.
À quoi sert cet examen
Rechercher dans les selles les kystes ou trophozoïtes de Giardia duodenalis, synonyme de G. lamblia et G. intestinalis, par examen direct ou après concentration [s2,s3].
L’examen peut être demandé devant une diarrhée ou d’autres symptômes compatibles, notamment flatulences, selles grasses, crampes abdominales, nausées et perte de liquides; certaines personnes infectées sont asymptomatiques [s1,s3,s4,s6].
La recherche est particulièrement pertinente lorsque le contexte comporte une exposition à une eau non traitée, un voyage, un contact en collectivité de jeunes enfants ou une autre exposition féco-orale [s1,s3,s4].
La microscopie reste utile pour rechercher Giardia et d’autres parasites intestinaux; des méthodes complémentaires comme la détection d’antigène ou les tests moléculaires peuvent être utilisées selon le plateau technique, mais elles ne sont pas équivalentes à la recherche microscopique décrite ici [s2,s3,s7].
L’OMS décrit les aides de paillasse comme un outil de diagnostic de routine et de formation pour identifier les œufs, larves, trophozoïtes, kystes et oocystes dans les selles par copromicroscopie [s5].
Valeurs de référence
| Type de résultat [s2,s6] | Résultat attendu [s2,s6] |
|---|---|
| Négatif / non détecté [s2,s6] | Aucun kyste ni trophozoïte de Giardia observé dans l’échantillon examiné par la méthode utilisée [s2,s6]. |
| Positif / détecté [s2,s6] | Un kyste et/ou un trophozoïte de Giardia observé dans les selles; le compte rendu devrait préciser la forme identifiée lorsque la méthode le permet [s2,s6]. |
Cet examen est qualitatif: il n’existe pas d’intervalle biologique chiffré adulte à fabriquer. Le laboratoire fait foi pour la méthode, la lecture microscopique et le libellé du résultat [s1,s2,s6].
Résultat attendu: non détecté dans les selles d’une personne indemne; détecté si un kyste ou un trophozoïte est observé. Aucune valeur de référence propre à une population africaine n’est fournie pour cet examen qualitatif [s2,s5,s6].
Une étude menée en Afrique de l’Est rapporte des performances de microscopie dans une population et une comparaison avec la PCR; ces résultats ne constituent pas un intervalle de référence et ne remplacent pas la méthode validée du laboratoire [s8].
Résultat attendu: aucun kyste ni trophozoïte de Giardia détecté dans l’échantillon; si l’un de ces éléments est observé, le résultat est rendu détecté ou positif selon la procédure du laboratoire [s2,s3,s6].
Aucun intervalle pédiatrique chiffré n’est applicable à cette recherche qualitative; le laboratoire fait foi pour la méthode et le compte rendu [s1,s2,s6].
Seuils de décision et gravité
Aucun seuil critique, seuil décisionnel ou seuil numérique de positivité n’est fourni pour la recherche microscopique qualitative de Giardia dans les sources consultées; donnée non disponible [s1,s2,s6].
Interprétation
Un résultat négatif signifie qu’aucun kyste ou trophozoïte n’a été observé dans l’échantillon examiné; il ne démontre pas à lui seul l’absence de Giardia lorsque l’excrétion est intermittente ou que la quantité présente est insuffisante pour être détectée [s1,s2,s3].
La répétition améliore la probabilité de détection: le CDC indique que plusieurs échantillons recueillis sur plusieurs jours peuvent être nécessaires, et le NCBI Bookshelf précise que trois échantillons sur plusieurs jours améliorent la sensibilité [s1,s3].
La microscopie peut être moins sensible que des méthodes antigéniques ou moléculaires dans certaines études; les performances publiées dépendent de la population, de la méthode et du comparateur et ne sont pas des seuils individuels [s3,s7,s8].
Un résultat positif signifie qu’un kyste ou un trophozoïte de Giardia a été identifié dans les selles par la méthode utilisée [s2,s6].
La présence de Giardia dans les selles est compatible avec une infection, mais LOINC précise que l’organisme peut aussi être retrouvé chez des personnes asymptomatiques; le résultat doit donc être mis en relation avec le contexte clinique sans conclure au-delà de ce que mesure l’examen [s1,s3,s6].
La microscopie peut montrer les kystes, typiquement dans les préparations humides, et les trophozoïtes dans des préparations permanentes, notamment après coloration trichrome [s2].
Facteurs qui faussent le résultat
L’excrétion de Giardia n’est pas constante: le CDC indique que les personnes infectées ne libèrent pas le parasite à chaque selle, ce qui peut conduire à un résultat négatif sur un prélèvement isolé [s1].
Le CDC recommande de recueillir trois échantillons sur plusieurs jours pour améliorer la détection; l’intervalle exact entre les prélèvements n’est pas donné dans la source consultée [s1,s3].
La recherche peut utiliser un examen direct et une procédure de concentration; les kystes sont habituellement vus dans une préparation humide et les trophozoïtes dans une préparation permanente [s2].
Dans l’étude menée en Afrique de l’Est, les échantillons ont été traités dans les 30 minutes pour la microscopie; ce délai décrit le protocole de cette étude et ne constitue pas un délai universel de rendu [s8].
La même étude rapporte que les changements de pH et l’utilisation préalable d’antibiotiques peuvent tuer les trophozoïtes et diminuer la sensibilité de la microscopie; ce sont des limites méthodologiques rapportées par l’étude, non un seuil de décision [s8].
Dans une étude sur 157 échantillons suspects de G. lamblia, la microscopie comparée à la PCR a présenté une sensibilité de 64,4 % (intervalle de confiance à 95 %: 48,9–78,1) et une spécificité de 86,6 % (78,9–92,3); ces chiffres sont propres à cette population et à ce protocole [s8].
Une revue rapporte pour la microscopie directe une sensibilité de 34,7–55 % et une spécificité de 96–100 %, et pour la concentration une sensibilité de 65,2–83 % et une spécificité de 85–97 %; ces fourchettes synthétisent des études hétérogènes et ne sont pas des valeurs de référence du patient [s7].
Les sources consultées ne documentent pas de condition particulière de grossesse, d’interférence médicamenteuse autre que l’antibiothérapie rapportée dans l’étude, de volume obligatoire, d’unité, de seuil critique ou de délai universel de rendu pour cet examen; ces éléments sont non disponibles et dépendent de la procédure du laboratoire [s1,s2,s3,s7,s8].
Sources
- Centers for Disease Control and Prevention. Testing and Diagnosis for Giardia Infection (2024)
- Centers for Disease Control and Prevention. DPDx — Giardiasis (2026)
- Weller PF, Leder K. Giardiasis (2026)
- National Library of Medicine. Giardia Infections (2024)
- World Health Organization. Bench Aids for the diagnosis of intestinal parasites, second edition (2026)
- Regenstrief Institute, LOINC Committee. LOINC Group LG41616-0 Giardia lamblia et LOINC 6412-1 Giardia lamblia Ag [Presence] in Stool by Immunoassay (2026)
- Hooshyar H, Rostamkhani P, Arbabi M, Delavari M. Giardia lamblia infection: review of current diagnostic strategies (2019)
- Emisiko J, Shaviya N, Shiluli C, et al.. Comparison of Microscopy and PCR for Detection of Giardia lamblia and Entamoeba histolytica in Human Stool Specimens in a Resource Limited Setting in Western Kenya (2020)