Recherche de microfilaires sanguines
Examen biologique : Parasitologie et mycologie. La recherche de microfilaires sanguines est un examen parasitologique qualitatif qui recherche des microfilaires dans le sang périphérique, habituellement sur goutte épaisse ou frottis coloré, avec identification morphologique ultérieure si un organisme est observé. Elle contribue à documenter une infection filarienne dans le cadre d’un examen individuel ou d’enquêtes de cartographie et de surveillance, mais la performance dépend notamment de l’espèce, de l’horaire, du volume de sang, de la méthode de concentration et du délai de préparation. Un résultat non détecté signifie que des microfilaires n’ont pas été observées par la méthode appliquée dans l’échantillon examiné; il ne constitue pas un intervalle biologique universel et doit être interprété avec la méthode et le contexte de prélèvement.
À quoi sert cet examen
La microscopie des frottis sanguins périphériques est une méthode habituelle pour identifier les microfilaires de la filariose lymphatique; les agents concernés comprennent notamment Wuchereria bancrofti, Brugia malayi et Brugia timori [s2].
La recherche sanguine de microfilaires peut aussi être utilisée pour la loase et la mansonellose, tandis que certaines filarioses comme l’onchocercose se recherchent préférentiellement sur une biopsie cutanée superficielle plutôt que dans le sang [s4,s5].
L’OMS décrit l’examen de gouttes épaisses de sang capillaire comme une méthode peu coûteuse et réalisable au niveau individuel ou communautaire pour cartographier l’endémicité de la filariose lymphatique et suivre les enquêtes de surveillance [s1].
Les frottis épais ou minces colorés au Giemsa ou à l’hématoxyline-éosine peuvent être utilisés, et des techniques de concentration comme la méthode de Knott ou la filtration membranaire peuvent améliorer la détection lorsque la charge microfilarienne est faible [s2,s5,s6].
La détermination morphologique doit tenir compte de la taille, de la gaine et de la disposition des noyaux; une observation positive peut donc conduire à une identification au genre ou à l’espèce, selon la qualité du prélèvement et de la préparation [s2,s5].
Valeurs de référence
| Résultat qualitatif attendu [s8] | Signification analytique [s1,s2,s4,s5] |
|---|---|
| Microfilaires détectées / présence [s8] | Des microfilaires sont observées dans le sang par la méthode utilisée; une caractérisation morphologique peut être réalisée sur le frottis ou après concentration [s2,s5]. |
| Microfilaires non détectées / absence d’observation [s8] | Aucune microfilaire n’est observée dans l’échantillon examiné par la méthode utilisée; ce résultat n’est pas équivalent à une exclusion universelle, car la détection varie selon l’horaire, l’espèce, le volume, la concentration et la sensibilité de la méthode [s2,s4,s7]. |
Pour cet examen qualitatif, le résultat attendu est « microfilaires détectées » ou « microfilaires non détectées »; aucun intervalle de référence numérique ni unité de concentration universelle ne s’applique [s1,s2,s8].
Le laboratoire fait foi pour la méthode validée, le type de prélèvement accepté, le seuil de détection analytique et la formulation du compte rendu; les codes LOINC lus décrivent une observation qualitative de présence ou d’identification, non une concentration universelle [s8].
Seuils de décision et gravité
Aucun seuil critique, seuil de décision ou seuil quantitatif universel n’a été fourni pour cet examen qualitatif dans les sources consultées; donnée non disponible [s1,s2,s4,s8].
La positivité correspond à l’observation de microfilaires selon la méthode appliquée, et non à une valeur chiffrée commune à toutes les méthodes [s2,s7,s8].
Facteurs qui faussent le résultat
La périodicité des microfilaires est un facteur majeur: les microfilaires de Wuchereria bancrofti et de Brugia circulent surtout la nuit, Loa loa surtout le jour, tandis que Mansonella perstans et Mansonella ozzardi n’ont pas de périodicité spécifique [s2,s3,s5].
Pour Brugia ou Wuchereria, le CDC indique un prélèvement nocturne après 20 h, et des sources de référence donnent une fenêtre optimale de 22 h à 2 h; une souche subpériodique de Wuchereria bancrofti du Pacifique peut avoir un pic entre 12 h et 18 h [s3,s5].
Le sang capillaire de piqûre digitale est recommandé pour les frottis, car les microfilaires se concentrent dans les capillaires périphériques; le sang veineux EDTA peut être concentré par la méthode de Knott ou par filtration [s3,s6].
Le volume et la technique influencent la détection: l’OMS décrit des gouttes épaisses de 20 à 60 µL, tandis que les techniques de comparaison étudiées incluent une chambre de comptage avec au moins 50 µL et une filtration membranaire sur 1 mL; les méthodes utilisant davantage de sang ou une concentration peuvent avoir une meilleure sensibilité [s1,s6,s7].
Les frottis doivent être traités aussi vite que possible; un retard peut modifier la morphologie et faire perdre la gaine de certaines espèces, ce qui peut entraîner une identification erronée [s3,s5].
La goutte épaisse concentre davantage les éléments sanguins et augmente l’efficacité de détection, mais la morphologie peut être moins facilement évaluée; le frottis mince et les méthodes de concentration sont choisis selon l’objectif et la méthode validée [s5,s6].
Les colorations décrites pour la détection des microfilaires comprennent Giemsa, Wright-Giemsa et l’hématoxyline de Delafield; la coloration, le pH et la qualité de préparation peuvent modifier l’aspect de la gaine [s5].
La gaine ne doit pas être interprétée isolément: un retard de traitement peut la faire disparaître chez des espèces normalement gainées, et des artefacts ou des contaminants de laboratoire peuvent imiter une microfilaire; la taille et la colonne nucléaire doivent être considérées avec elle [s5].
La sensibilité varie selon le moment, le type de sang, le volume, la concentration, la filtration et le traitement de l’échantillon; les comparaisons entre enquêtes ne sont donc pas directement interchangeables sans tenir compte de la technique utilisée [s7].
Aucune information suffisamment précise n’a été lue sur un effet du jeûne, de médicaments ou de la grossesse sur ce résultat; donnée non disponible dans les sources consultées [s1,s2,s3,s4,s8].
Sources
- World Health Organization (WHO). Diagnosis and treatment — Lymphatic Filariasis (2026)
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC), DPDx. Lymphatic Filariasis (2019)
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC), DPDx. Blood Specimens — Specimen Collection (2026)
- StatPearls Publishing; auteurs de la fiche Filariasis. Filariasis (2025)
- Mathison BA, Couturier MR. Diagnostic Identification and Differentiation of Microfilariae (2019)
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC), DPDx. Blood Specimens — Specimen Processing (2026)
- Melchers NVSV, et al.. Standardisation of lymphatic filariasis microfilaraemia prevalence estimates using different diagnostic methods and blood volumes: a systematic review and meta-analysis (2020)
- LOINC, Regenstrief Institute. LOINC 10664-1 Filaria identified in Blood by Thin film; LOINC 91900-1 Parasite [Presence] in Blood by Light microscopy (2026)