Recherche de Schistosoma mansoni fécale

À quoi sert cet examen

Rechercher dans les selles les œufs de Schistosoma mansoni lorsque la forme intestinale de la schistosomiase est envisagée; le CDC indique que l’examen des selles est celui à réaliser lorsque S. mansoni ou S. japonicum est suspecté [s2].

L’examen apporte une preuve parasitologique directe par identification microscopique des œufs; l’OMS décrit la détection des œufs de la schistosomiase intestinale dans les selles par la technique de Kato-Katz [s1,s2].

Le contexte clinique compatible avec une atteinte intestinale peut comprendre douleurs abdominales, diarrhée ou sang dans les selles, signes décrits par l’OMS; ces signes ne suffisent pas à interpréter isolément un résultat [s1].

La copromicroscopie fait partie des méthodes de routine et d’enseignement pour identifier les œufs et autres éléments parasitaires dans les selles [s3].

Valeurs de référence

Résultat attendu : non détecté ou négatif, c’est-à-dire aucun œuf de Schistosoma mansoni observé dans l’échantillon examiné [s1,s2,s4].

Résultat détecté ou positif : des œufs compatibles avec Schistosoma mansoni sont observés dans les selles; le compte rendu doit préciser l’élément identifié et la méthode utilisée [s2,s4].

Cet examen est qualitatif : aucun intervalle de référence chiffré adulte ne s’applique dans les sources consultées. Le laboratoire fait foi pour la méthode, la lecture microscopique et le libellé du compte rendu [s1,s2,s4].

Résultat attendu : non détecté ou négatif, sans œuf de Schistosoma mansoni observé; aucune valeur de référence africaine universelle n’est fournie par les sources consultées [s1,s2].

La présence de S. mansoni est particulièrement pertinente dans les zones de transmission d’Afrique subsaharienne, mais les fréquences ou performances d’études locales ne constituent pas un intervalle de référence [s1,s2,s5,s6].

Résultat attendu : non détecté ou négatif, sans œuf de Schistosoma mansoni observé; aucun intervalle pédiatrique chiffré n’est applicable à cet examen qualitatif [s1,s2,s4].

Chez l’enfant, la performance dépend notamment de l’intensité de l’infection et du nombre de frottis examinés; les résultats d’une étude d’enfants ne remplacent pas la procédure validée du laboratoire [s6].

Seuils de décision et gravité

Aucun seuil critique, seuil décisionnel ou seuil numérique universel de positivité n’est fourni pour cette recherche qualitative. Les quantités de selles décrites pour un frottis simple ou pour Kato-Katz sont des paramètres de méthode, non des seuils cliniques [s2].

Interprétation

Un résultat négatif signifie qu’aucun œuf n’a été observé dans l’échantillon analysé; il peut aussi correspondre à une excrétion intermittente ou à une quantité d’œufs trop faible pour être détectée [s2,s5].

Dans l’étude menée en Zambie sur 89 échantillons urinaires filtrés, la sensibilité rapportée du Kato-Katz était de 57 % et sa spécificité de 100 % selon le comparateur de l’étude; ces valeurs décrivent cette population et ce protocole, et ne sont pas des valeurs de référence générales [s5].

Dans une étude d’enfants suivis avec six Kato-Katz comme référence de comparaison, la sensibilité de deux Kato-Katz était de 97,8 % au départ, de 51,9 % quatre semaines après le traitement et de 74,0 % six mois après; ces performances ne sont pas transposables automatiquement à chaque laboratoire ou population [s6].

Un résultat positif ou détecté signifie que des œufs de Schistosoma mansoni ont été observés dans les selles; l’identification microscopique des œufs est la méthode habituelle de diagnostic parasitologique décrite par le CDC [s2].

La quantité d’œufs peut être quantifiée dans les enquêtes de terrain ou à des fins de recherche par Kato-Katz, mais cette quantification n’est pas un intervalle biologique de référence pour le présent examen qualitatif [s1,s2].

Facteurs qui faussent le résultat

Les œufs de S. mansoni sont éliminés avec les selles; la recherche fécale est donc privilégiée lorsque cette espèce intestinale est suspectée, tandis que l’urine concerne surtout S. haematobium [s1,s2].

Un frottis simple peut examiner 1 à 2 mg de matière fécale; pour Kato-Katz, la source CDC décrit 20 à 50 mg et un gabarit standard calibré à 41,7 mg. Ces quantités sont des paramètres de méthode et non des seuils de positivité [s2].

La technique de Kato-Katz utilise une cellophane colorée au bleu de méthylène et imprégnée de glycérine ou des lames de verre pour rechercher les œufs de schistosomes intestinaux [s1].

Les œufs peuvent être excrétés de façon intermittente ou en petite quantité; des examens répétés et/ou une procédure de concentration peuvent améliorer leur détection [s2].

La méthode Kato-Katz dépend du recueil, du transport et de l’examen de selles fraîches; une conservation ou un délai non conforme à la méthode du laboratoire peut réduire la qualité de la recherche [s5].

L’homogénéisation de l’ensemble des selles peut améliorer la récupération des œufs de S. japonicum, car ils peuvent être distribués de manière inégale; ce point décrit une limite de la matrice fécale et ne doit pas être extrapolé sans validation à S. mansoni [s2].

Les aides de paillasse de l’OMS proposent des planches pour l’identification microscopique et des procédures copromicroscopiques, mais la source ne fournit pas de délai universel de rendu, de condition de jeûne, d’interférence médicamenteuse ou de condition particulière de grossesse; ces données sont non disponibles ici [s3].

Sources

1. World Health Organization. Schistosomiasis (2026)
2. Centers for Disease Control and Prevention. Schistosomiasis (2026)
3. World Health Organization. Bench Aids for the diagnosis of intestinal parasites, second edition (2026)
4. Regenstrief Institute, LOINC Committee. 11085-8: Schistosoma sp identified in Stool by Concentration (2026)
5. Lodh N, Mwansa JCL, Mutengo MM, Shiff CJ. Diagnosis of Schistosoma mansoni without the Stool: Comparison of Three Diagnostic Tests to Detect Schistosoma mansoni Infection from Filtered Urine in Zambia (2013)
6. Lamberton PHL, Kabatereine NB, Oguttu DW, Fenwick A, Webster BL, et al.. Sensitivity and Specificity of Multiple Kato-Katz Thick Smears and a Circulating Cathodic Antigen Test for Schistosoma mansoni Diagnosis Pre- and Post-repeated-Praziquantel Treatment (2014)