Recherche d'œufs et parasites dans les selles

À quoi sert cet examen

L'examen recherche au microscope des parasites intestinaux et leurs œufs dans les selles ; le résultat peut préciser le type de parasite et le nombre observé selon le compte rendu du laboratoire [s3].

• Explorer une diarrhée, des selles liquides, des crampes, des flatulences ou une autre symptomatologie abdominale pouvant être liée à un parasite intestinal [s3,s7].
• Évaluer des douleurs abdominales, du sang ou du mucus dans les selles, des selles grasses et malodorantes, des nausées ou vomissements, de la fièvre ou une perte de poids lorsque ces symptômes persistent ou sont compatibles avec une infection intestinale [s3].
• Renforcer l'exploration lorsqu'il existe une déshydratation ou un trouble électrolytique, une immunodépression, un très jeune âge ou un âge avancé, ou une exposition à une eau ou à un voyage à risque [s3].
• Contribuer à l'évaluation de l'efficacité d'un traitement antiparasitaire lorsque le prescripteur le demande [s3].

Les aides OMS destinées aux laboratoires et aux personnels de terrain décrivent l'identification des œufs, larves, trophozoïtes, kystes et oocystes dans les selles ainsi que les méthodes copromicroscopiques et principales colorations [s4].

Valeurs de référence

Pour cet examen qualitatif, il n'existe pas d'intervalle de référence numérique à appliquer ; l'interprétation finale fait foi selon la méthode, les organismes recherchés et la population desservie par le laboratoire [s3,s6].

Interprétation

Un résultat négatif signifie qu'aucun parasite ni œuf n'a été trouvé dans l'échantillon examiné [s3].

Un résultat négatif sur un seul prélèvement ne suffit pas toujours à exclure une infection : une faible quantité d'organismes, une excrétion intermittente ou une dégradation rapide des trophozoïtes peuvent réduire la détection [s3,s5,s8].

Un résultat positif signifie que des parasites et/ou leurs œufs ont été trouvés dans l'échantillon ; le compte rendu peut indiquer le type de parasite et la quantité observée [s3].

L'identification repose sur la morphologie microscopique des stades parasitaires dans les préparations appropriées ; l'aide OMS couvre notamment les œufs, larves, trophozoïtes, kystes et oocystes [s4].

Facteurs qui faussent le résultat

• Prélever dans un récipient sec, propre et étanche, sans contamination par urine, eau, sol, papier hygiénique ou eau des toilettes [s1,s3].
• Traiter ou conserver rapidement les selles fraîches ; les selles liquides, plus susceptibles de contenir des trophozoïtes, doivent être examinées dans les 30 minutes suivant l'émission, les selles molles dans l'heure, et les selles formées peuvent être gardées jusqu'à un jour avec réfrigération nocturne si nécessaire [s2].
• Si l'examen immédiat n'est pas possible, utiliser le conservateur validé par le laboratoire ; le CDC décrit notamment le formol à 10 % et le PVA, et recommande, lorsque les deux sont utilisés, un volume de selles pour trois volumes de conservateur [s1].
• Les conservateurs n'ont pas les mêmes performances : le formol à 10 % préserve bien les œufs d'helminthes, larves, kystes et coccidies mais préserve mal la morphologie des trophozoïtes ; le PVA préserve mieux les trophozoïtes et kystes mais moins bien les œufs de vers, larves, coccidies et microsporidies [s1].
• Des antiacides, le kaolin, l'huile minérale et d'autres produits huileux, certains antidiarrhéiques non absorbables, le baryum ou le bismuth, les antimicrobiens et les colorants biliaires peuvent rendre le prélèvement inadéquat ou diminuer la détection ; le CDC indique un délai d'élimination de 7 à 10 jours pour le baryum ou le bismuth, de 2 à 3 semaines pour les antimicrobiens et de 3 semaines pour les colorants biliaires [s1].
• Les trophozoïtes se détériorent rapidement ; la concentration sépare les parasites des débris et peut augmenter les chances de détection lorsque les organismes sont peu nombreux, mais la flottation peut affaisser certaines parois d'œufs et certains œufs ne flottent pas ; la sédimentation est présentée par le CDC comme plus simple et moins exposée aux erreurs techniques pour un laboratoire général [s2,s8].
• Le CDC recommande d'examiner au moins trois échantillons recueillis des jours différents ; sa page de collecte indique, si possible, trois prélèvements espacés de 2 à 3 jours [s1,s7].
• Dans une étude rétrospective menée en contexte de forte prévalence, le premier prélèvement a permis 75,9 % des diagnostics évaluables, les deux premiers 92 %, et le troisième a apporté une information supplémentaire dans 8 % des cas ; ces résultats ne remplacent pas les recommandations locales et ne sont pas directement généralisables à toutes les populations [s5].
• Un examen de selles de routine peut ne pas détecter certains organismes ou certains stades ; si la suspicion persiste, le prescripteur et le laboratoire peuvent demander des colorations, des tests antigéniques, moléculaires ou d'autres examens ciblés [s2,s7,s8].

Sources

1. Centers for Disease Control and Prevention (CDC), DPDx. Stool Specimens – Specimen Collection (2026)
2. Centers for Disease Control and Prevention (CDC), DPDx. Stool Specimens – Specimen Processing (2026)
3. MedlinePlus, U.S. National Library of Medicine. Ova and Parasite Test (2023)
4. Organisation mondiale de la Santé / Organisation panaméricaine de la Santé. Bench aids for the diagnosis of intestinal parasites, 2nd edition (2026)
5. Charles P. Cartwright. Utility of Multiple-Stool-Specimen Ova and Parasite Examinations in a High-Prevalence Setting (1999)
6. Regenstrief Institute / LOINC Committee. 10701-1 — Ova and parasites identified in Stool by Concentration (2026)
7. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Diagnosis of Parasitic Diseases (2024)
8. Meyer E.A.; dans Baron S. (éditeur). Intestinal Protozoa: Amebas (1996)